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純干貨!顯色示蹤熒光定量相對定量操作解析

來源:翌圣生物科技(上海)股份有限公司   2025年03月03日 08:17  

實驗材料:

1.cDNA樣本:通過上游反轉錄反應得到的cDNA。
2.熒光定量試劑:Hieff UNICON® ColorGPS qPCR SYBR Green Master Mix (No/Low/High Rox)。
3.其他試劑:RNase-free H2O、相關基因上下游引物(儲存濃度10 μM)。
4.設備與耗材:移液器、qPCR儀、冰盒、離心機、RNase-free八連排、RNase-free離心管。


實驗步驟:

01

試劑&樣本前期準備

試劑解凍和混勻

  • 從冰箱中取出:

    從-20℃冰箱中取出含酶試劑,立即放入冰盒中(冰上操作);

    避免將試劑直接放在室溫下解凍,以免溫度波動影響酶的活性。

  • 緩慢解凍:

    讓試劑在冰上自然解凍,通常需要5-10分鐘;

    如果需要快速解凍,可以將試劑握在手中輕輕搖晃,但不要過度加熱。

  • 輕輕顛倒混勻:

    解凍后,將試劑管輕輕上下顛倒幾次,使試劑充分混勻;

    避免劇烈震蕩或渦旋混勻,以免破壞酶的活性。

  • 低速離心:

    將試劑管短暫離心(5-10秒,1000 rpm左右),使管壁和管蓋上的液體集中到管底;

    離心后再次輕輕混勻,確保試劑均勻分布;

    混勻后的試劑應繼續放在冰上,避免長時間暴露在室溫下。

Tips:混勻時盡量避免產生氣泡,氣泡可能會影響酶的活性或實驗結果的準確性。


02

模板稀釋(若需要)

稀釋步驟

  • 若需追蹤模板,按以下步驟稀釋:

    取1 μL 10×Dilution Buffer + 9 μL無菌超純水 → 配制1×Dilution Buffer;

    用1×Dilution Buffer稀釋cDNA至目標濃度(建議稀釋至Ct值20-30的范圍內)。

  • 若無需追蹤模板,直接用無菌超純水稀釋cDNA或者直接使用cDNA原液。


03

熒光定量PCR反應體系配制

常見的熒光定量儀器為96孔反應,大體分為12列×8行。舉例說明:

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備注說明:

  • 相對定量分析基因表達情況時,為排除樣本和操作的影響,對數據進行歸一化,需要有內參基因,例如GAPDH、β-actin等等。

  • 技術重復通常建議設置3孔,為保證后續取平均值或剔除異常值。當然根據自己的需求進行調整,設置2孔重復或者4孔重復均可。

  • 依據MIQE準則,NTC(陰性對照)建議設置,一方面用于污染風險判斷,另一方面其也是一套實時熒光定量 PCR (qPCR) 實驗設計及數據報告實踐指南以及與發文共享實驗信息的標準。


熒光定量PCR體系(大體系配制減少誤差)

大體系配制

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以上述投入2μL cDNA模板檢測不同樣本基因1為例:

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將上述溶液依次加好后,將管蓋蓋嚴,用手輕彈管壁,使各組分充分混勻,再放入小型離心機,短暫離心1-2s,再次輕彈管壁(防止有氣泡),瞬間離心(防止部分溶液沾到管壁上)并置于冰/冰板上。

備注:如使用顯蹤劑建議模板投入體積控制在2-5 μL,以保證顯蹤效果,如使用cDNA母液建議投入體積控制在2 μL(反應體系的1/10)以內防止影響擴增效果。


上樣體系配置
  • 按照上機儀器選取對應耗材(八聯排或96孔板)。

  • 在對應耗材中按照布板依次分裝18μL/孔步驟1)配置的大體系Mix。

  • 在每個孔中加入2 μL對應模板。

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移液槍加樣Tips(吸一排二):


  • 吸取液體:緩慢、平穩地按下按鈕至第一檔(不是按到底),然后將吸頭浸入液面下,然后緩慢、平穩地松開檔位至原位來吸取液體。注意不要讓吸頭接觸到容器的邊緣或底部,以防止污染。

  • 液體排出:將吸頭對準接收容器,然后緩慢、平穩地按下按鈕至第二檔(按到底)以排出液體。確保所有的液體都被排出。

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完成加樣后,將管蓋蓋嚴,用手輕彈管壁,使各組分充分混勻,再放入小型離心機,短暫離心1-2s,再次輕彈管壁(防止有氣泡),瞬間離心(防止部分溶液沾到管壁上)確保無氣泡后置于潔凈的96孔PCR管架。

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備注:注意觀察每一槍是否吸到了氣泡,若出現氣泡吸取則會導致實驗數據出現較大偏差。


04

熒光定量PCR上機運行

上機前,仔細檢查管子,確保正上方管蓋、管身沒有記號筆染料,管內無氣泡、管壁無液體。


若采用常規程序,則進行以下設置:

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備注:
不同熒光定量qPCR試劑核心的酶和Buffer組成都存在差異,對應說明書上的程序是該產品大多數情況下的最適反應條件,建議按照說明書的程序進行儀器設置,減少因用其他程序帶來的數據偏差;
熔解曲線程序可選用儀器默認程序。


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備注:以ABI Q5常規程序為例,在進行程序設置時,確保在退火/延伸階段和熔解曲線的升溫階段打開數據信號收集開關。


若采用快速程序,需確認儀器本身是否可以快速升降溫,運行快速程序。以下以ABI Q5為例:

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05

結果判定

  • 觀察熔解曲線峰是否單一。

  • 初步判斷復孔間Ct值差距是否<0.5,或者進一步計算復孔間CT值STD是否<0.2。

  • 內參基因Ct值盡量在14-25之內,不要過小也不要過大。


06

數據分析

下機得到的Excel數據處理如下:

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圖示說明:

④:對照組校正后的數值;

③/④:每個小組校正后的數值比上對照組校正后的數值;

意圖表上的數據在excel中采用了保留2位小數的形式,實際計算時不可忽略小數點后的所有數字,減少按數字的動作,活用Excel。


07

注意事項

1、引物設計好壞對于最終實驗的成功和實驗結果都會有一定的影響,可參考干貨軟文,解鎖更多引物設計寶藏。


2、長時間放置的引物,建議嘗試先用預實驗(跟著其他實驗或人帶上幾孔測測看),避免直接進行大規模正式實驗,從而造成不必要的風險損失。


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方法

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Hieff UNICON® ColorGPS qPCR SYBR Green Master Mix (High Rox)

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