一、檢測原理
本試劑盒采用 ELISA 雙抗體夾心法原理。用純化的 SARS-CoV-2Nucleoprotein 抗體包被微孔板,向已包被板微孔中依次加入標準品及待測樣本,同時加入 HRP 標記的 SARS-CoV-2Nucleoprotein 抗體,形成抗體 - 抗原 - 酶標檢測抗體復合物,經過洗滌后加入底物 TMB 顯色。TMB 在 HRP 酶的催化下轉化成藍色,并在酸的作用下轉化成最終的黃色。顏色的深淺和樣品中的 SARS-CoV-2Nucleoprotein 呈正相關。用酶標儀在 450nm 波長下測定吸光值(OD 值),通過繪制標準曲線計算樣品中 SARS-CoV-2 Nucleoprotein 濃度。
二、試劑盒組成
試劑盒組成 | 規格(96T) | 保存條件 |
抗體包被板條 | 8×12 | 2 - 8℃保存 |
標準品 | 1 ml×2 瓶 | 2 - 8℃保存 |
S1 標準品 / 樣本稀釋液 | 15 ml×1 瓶 | 2 - 8℃保存 |
檢測抗體濃縮液(100×) | 30μl×2 瓶 | 2 - 8℃保存 |
S2 檢測抗體稀釋液 | 15ml×1 瓶 | 2 - 8℃保存 |
濃縮洗滌液(20×) | 30ml×1 瓶 | 2 - 8℃保存 |
顯色底物(避光) | 12ml×1 瓶 | 2 - 8℃保存 |
終止液 | 6ml×1 瓶 | 2 - 8℃保存 |
封板膠紙 | 4 張 | |
說明書 | 1 份 |
三、其它實驗材料(不提供,但可協助購買)
1. 酶標儀 (主波長 450nm,參考波長 630nm)
2. 高精度可調移液器(已校準)及吸頭:0.5 - 10,2 - 20,20 - 200,200 - 1000μl。一次檢測樣本較多時,建議使用多通道移液器。
3. 自動洗板機或洗瓶
4. 微量振蕩器
5. 雙蒸水或去離子水
6. 坐標紙
7. 量筒
四、注意事項
8. 試劑盒保存在 2 - 8℃,未用完的標準品,建議丟棄。不可混合使用不同來源或不同批號的試劑盒組分,請在有效期內使用本產品。
9. 濃縮洗滌液低溫取出可能會伴有結晶析出,稀釋時可在水浴中加熱助溶,不影響使用。
10. 各步加樣均應使用移液器,并經過校準,以免產生誤差。建議一次加樣時間最好控制在 5 分鐘內,如樣本數量較多,推薦使用排槍加樣。
11. 請每次測定的同時做標準曲線,最好做復孔。如樣本中待測物質含量高于試劑盒檢測上限(樣本 OD 值大于標準品孔第一孔的 OD 值),請先用樣本稀釋液稀釋一定的倍數(n 倍)后再測定,計算時需乘以總稀釋倍數。
12. 為避免交叉污染,在加入不同濃度的標準品、不同樣本、不同試劑時謹記及時更換吸頭,封板膠紙只限一次性使用。
13. 濃縮酶結合物及顯色底物請避光保存,顯色底物在添加之前,應保持無色,請勿使用已變為藍色的顯色底物。
14. 嚴格按照說明書的操作進行,試驗結果判定必須以酶標儀讀數為準。
五、樣本收集、處理及保存方法
15. 細胞上清液:將培養基移至離心管內,于 4℃下,1500rpm 離心 10 分鐘,取上清進行分裝并在 - 80℃下保存樣品,盡可能減少反復凍融次數。
16. 細胞提取物:吸取培養基并用預冷 PBS 洗滌細胞一次,吸出 PBS,在 100 mm 培養板加入 0.5ml 提取緩沖液。收集細胞至經過預冷的離心管中,短暫渦旋后在冰上孵育 15 - 30 分鐘,于 4℃下 13000rpm 離心 10 分鐘,將上清液(這里是指可溶性細胞提取物)分裝至預冷的離心管中,并于 - 80℃保存,盡可能減少反復凍融次數。
提取緩沖液:100 mM Tris(pH 7.4)、150 mM NaCl、1 mM EGTA、1 mM EDTA、1% Triton X - 100、0.5% 脫氧膽酸鈉、磷酸酶抑制劑混合物、蛋白酶抑制劑混合物、PMSF。
17. 若樣本無法立即檢測,請將其按最小使用量分裝, - 20℃ — - 80℃保存,避免反復凍融。如果樣本中含有大量顆粒,檢測前先離心或過濾去除;室溫下解凍,請勿于 37℃或更高的溫度加熱解凍。
18. 不能檢測含 NaN3 的樣本,因 NaN3 抑制辣根過氧化物酶的活性。
19. 請根據實際情況,將樣本做適當倍數稀釋(建議根據預試驗結果確定稀釋倍數)。
六、試劑準備
20. 試劑回溫:請在實驗前 30min 內,將試劑盒和待測樣本置于室溫下回溫。
21. 洗滌液配制:根據濃縮洗液的濃縮倍數,用雙蒸水或去離子水進行相應倍數稀釋后備用。
22. 標準品梯度稀釋:取出試劑盒提供的標準品(25ng/ml),然后取 5 只聚丙烯試管,各加入 500μl 標準品 / 樣本稀釋液(S1),按照以下濃度進行 2 倍稀釋:25、12.5、6.25、3.125、1.56、0.78 ng/ml 進行稀釋。25ng/ml 為標準曲線最高點濃度,標準品 / 樣本稀釋液(S1)作為標準曲線的零點(0ng/ml)。使用過的標準品原液(25ng/ml)未用完的應廢棄或根據需要按照一次用量分裝,并將其貯存在 - 20~ - 80℃冰箱。
23. 檢測抗體工作液:根據試驗所需用量,用檢測抗體稀釋液(S2)將檢測抗體濃縮液(100×)稀釋成 1 倍應用工作液,請于 30min 內使用。
七、操作步驟
24. 加樣:根據試驗所需用量,取出相應抗體包被板條,分別將已配制好的標準品、標準品零點(S1)及待測樣本以 50μl / 孔加入實驗孔底部,盡量不觸及孔壁,同時,各實驗孔加入檢測抗體工作液(50μl / 孔),充分混勻。
25. 溫育:用封板膜封板后置 37℃溫育 90 分鐘。
26. 洗滌:小心揭掉封板膜,棄去液體,甩干,每孔加滿洗滌液,靜置 30 秒后棄去,如此重復 5 次,拍干。
27. 顯色:每孔加入 100μl 顯色底物,用封板膠紙封板后室溫顯色 10 - 20min。
28. 終止:每孔加終止液 50μl(此時藍色立轉黃色)。
29. 測定:用酶標儀 450nm 波長測定各孔的吸光度(OD 值),測定應在加終止液后 5min 以內進行。
八、結果判斷
30. 建議采用雙波長讀數,即每個標準品和樣本的 450nm OD 值減去 630nm OD 值,為最終數值,如果做復孔,求其平均值。
31. 使用計算機軟件以吸光度 OD 值為縱坐標 (Y),相應的 SARS-CoV-2Nucleoprotein 標準品濃度為橫坐標 (X),生成標準曲線,樣本的 SARS-CoV-2 應稀釋倍數。
本圖僅供參考,應以同次試驗標準品所繪標準曲線為準
九、試劑盒性能
批內與批間差應小于 10%
十、檢測范圍
0.78 ng/ml - 25 ng/ml
十一、靈敏度
0.4 ng/ml
十二、常見問題分析及解決辦法
問題 | 可能原因 | 解決辦法 |
無顏色 | 不同試劑盒或不同批號的試劑混合 | 重新檢查試劑的標簽,確準所有組分都屬于正使用的試劑盒中的。不能混用不同試劑盒或不同批號的試劑。 |
漏加抗體、酶、顯色劑 | 檢查操作流程,注意不要漏加 | |
HRP 酶污染了疊氮鈉 | 使用新配制的試劑,禁含疊氮鈉 | |
試劑配制 / 使用有誤 | 重做試驗,嚴格按說明書操作,每次配制和使用前看清標簽 | |
顯色弱 | 超過有效期的產品可能會產生很弱的信號 | 檢查產品有效期 |
縮短孵育時間能使實驗信號變弱 | 檢查孵育時間 | |
使用了被污染的試劑 | 檢查試劑是否被污染 | |
儀器設定不正確,濾光片不匹配 | 儀器是否設定正確,濾光片的使用等 | |
洗滌操作不規范 | 洗滌不充分,使用手工洗板常出現,洗瓶洗滌,每孔應充滿洗滌緩沖液,傾出時應迅速。若用洗板機,應校準并設定足夠充滿每孔的體積量。板內側不應接觸設備,檢查每孔是否有殘留的洗液或每孔加樣量的體積是否準確,可在兩次洗板之間加 30 秒的浸泡 | |
高背景 | 實驗中孵育溫度和時間不適當 | 確定每一試驗步驟的孵育溫度和時間是否適當 |
酶加量過多 | 加酶前驗看移液器調節量是否準確,檢查稀釋度,若必要進行效價測定 | |
標曲佳但樣本孔無信號 | 樣本中靶標物含量低或樣本中無靶標物 | 設置陽性對照,重復實驗 |
樣本基質效應影響檢測 | 重新稀釋樣本后復測 | |
標曲佳但樣本信號偏高 | 樣本中待檢物含量超過標準曲線范圍 | 重新稀釋樣本后復測 |
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