在完成了小鼠淋巴瘤細胞EL4的基本準備與復蘇步驟后，接下來是細胞培養的關鍵階段。首先，將復蘇后的EL4細胞懸液輕輕吹打均勻，以避免細胞團塊的形成，這有助于細胞在培養環境中的均勻分布和生長。隨后，使用臺盼藍染色法檢測細胞活力，確保大部分細胞保持活性，為后續的實驗提供可靠的細胞基礎。

     接著，根據實驗需求調整細胞密度，通常將細胞懸液稀釋至適宜的濃度后，接種至預先準備好的含有培養基（包括RPMI-1640培養基、10%胎牛血清、雙抗等）的培養瓶中。注意在接種過程中避免產生氣泡，氣泡可能會干擾細胞貼壁或造成培養基分布不均。

    培養瓶置于37℃、5% CO2的恒溫培養箱中培養，這是維持EL4細胞正常生長代謝的必要條件。每日需觀察細胞生長情況，包括形態、密度及培養基的顏色變化，以判斷是否需要更換新鮮培養基或進行傳代培養。一般而言，當細胞密度達到80%-90%時，應進行傳代操作，以避免細胞因過度生長而衰老或死亡。

    在傳代時，首先輕輕吸去舊培養基，加入適量PBS緩沖液洗滌細胞表面，去除殘留的培養基和死細胞。然后，加入適量胰酶進行消化，待細胞邊緣變圓、輕輕搖晃即可脫落時，立即加入含血清的培養基終止消化。通過輕柔吹打使細胞分散成單細胞懸液，并按需進行傳代接種或收集細胞進行后續實驗。

     通過精心細致的操作和持續的觀察，可以確保EL4細胞在體外培養過程中保持穩定的生長狀態，為后續的科學研究提供可靠的細胞模型。